大鼠谷胱甘肽(GSH)ELISA试剂盒使用说明书

2011-07-25 11:58 · Truda

本实验采用双抗体夹心ABC-ELISA法。大鼠

(用于血清、谷胱甘肽血浆、试剂细胞培养上清液和生物体液内)

原理

本实验采用双抗体夹心ABC-ELISA法。盒使用抗大鼠GSH单抗包被于酶标板上，用说标准品和样品中的明书GSH与单抗结合，加入生物素化的大鼠抗大鼠GSH，形成免疫复合物连接在板上，谷胱甘肽辣根过氧化物酶标记的试剂Streptavidin与生物素结合，加入底物工作液显蓝色，盒使最后加终止液硫酸，用说在450nm处测OD值，明书GSH浓度与OD值成正比，大鼠可通过绘制标准曲线求出标本中GSH浓度。谷胱甘肽

试剂盒组成（2-8℃保存）

酶标板（Coated Wells）	96孔	酶标抗体工作液（Enzyme Conjugate）	12ml
10×标本稀释液（Sample Buffer）	12ml	20×浓缩洗涤液（Wash Buffer）	50ml
标准品（Standards）：2nmol/瓶	2瓶	底物工作液（TMB Solution）	12ml
第一抗体工作液（Biotinylated Antibody）	12ml	终止液（Stop Solution）	12ml

准备试剂与收集血样

1.  收集标本：血清、试剂血浆（EDTA、柠檬酸盐、肝素抗凝）、细胞培养上清液、组织匀浆等尽早检测，2-8℃保存48小时；更长时间须冷冻（-20℃或-70℃）保存，避免反复冻融。血清、血浆作1：100稀释（取10ul，加标本稀释液990ul,稀释100倍），尿液2倍稀释(取100ul，加标本稀释液100ul,稀释2倍)后检测。细胞培养上清可以不做稀释直接检测。

2. 标准品液配制：使用前加入0. 5ml蒸馏水混匀，配成4000pmol/ml的溶液。设标准管8管，每管加入标本稀释液200ul。在第一管中加入4000pmol/ml的标准品溶液200ul混匀后用加样器吸出200ul，移至第二管。如此反复作对倍稀释，从第七管中吸出200ul弃去。第八管为空白对照。

3. 10×标本稀释液用蒸馏水作1:10倍稀释（示例：1ml浓稀释液+9ml蒸馏水）。

4. 洗涤液：用重蒸水1:20稀释（示例：1ml浓缩洗涤液加入19ml的重蒸水）

检测程序

1. 加样：每孔各加入标准品或待测样品100ul，将反应板充分混匀后置37℃120分钟。

2. 洗板：用洗涤液将反应板充分洗涤4-6次，向滤纸上印干。

3. 每孔中加入第一抗体工作液100ul。将反应板充分混匀后置37℃60分钟。

4. 洗板：同前。

5. 每孔加酶标抗体工作液100ul。将反应板置37℃30分钟。

6. 洗板：同前。

7. 每孔加入底物工作液100ul，置37℃暗处反应15分钟。

8. 每孔加入100ul终止液混匀。

9. 30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。

结果计算与判断

1. 所有OD值都应减除空白值后再行计算。

2. 以标准品2000、1000、500、250、125、62. 5、31. 2、0pmol/ml为横坐标，OD值为纵坐标，在坐标纸上作图，画出标准曲线。

3. 根据样品OD值在该曲线图上查出相应GSH含量，再乘上稀释倍数即可。

试剂盒性能

1. 灵敏度：最小的GSH检测浓度小于15pmol/ml。

2. 特异性：可同时检测重组或天然的大鼠GSH。不与大鼠其它细胞因子有交叉反应。

3. 重复性：板内、板见变异系数均小于10. 2％。

注意事项

1. 以上标准孔及待测样品均建议做复孔，每次测定应同时做标准曲线。

2. 洗涤过程很关键。洗涤不充分将导致精确度误差及OD值错误地升高。

3. 板条开封后剩余板条要再封好，保持板条干燥。

4. 本试剂盒宜置4oC冰箱保存。

5. 本试剂盒仅用于科研，不能用于临床诊断！

 

来源：上海西唐生物科技有限公司

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